m6A甲基化是最近的熱點(diǎn),其最大的特點(diǎn)之一就是易于和自己的課題結(jié)合。這篇文章的亮點(diǎn)在于我第一次系統(tǒng)地研究了m6A甲基化和鐵死亡的結(jié)合,并建立了較完善的研究方法,對大家的研究啟發(fā)很大。甚至可以模仿或套用。
m6A和鐵死亡相關(guān)的基礎(chǔ)知識
磨刀不誤砍柴工,在進(jìn)入正題之前一定要先看看m6A和鐵死亡相關(guān)的基礎(chǔ)知識。N6-甲基腺嘌呤(m6A)是真核生物最常見和最豐富的RNA分子修飾。從發(fā)育和代謝到生殖。m6A存在于很多物種質(zhì)中,占到了RNA堿基甲基化修飾的80%。m6A主要分布在mRNA中,也出現(xiàn)在非編碼RNA如tRNA, rRNA和snRNA。在轉(zhuǎn)錄成的RNA中相對高的m6A含量會影響RNA的代謝過程,比如剪切,核轉(zhuǎn)運(yùn),翻譯能力和穩(wěn)定性,以及RNA轉(zhuǎn)錄。說的這么正式,我總結(jié)一下:m6A非常常見,你所研究的疾病或表型很有可能涉及。
下圖帶你全面了解m6A動態(tài)過程。
M6A修飾是一個(gè)高度動態(tài)和可逆的過程,涉及到負(fù)責(zé)安裝稱為“Writers”的修飾、移除稱為“Erasers”的甲基化和識別稱為“Readers”的修飾的酶(圖1)。每一類調(diào)節(jié)器的都可以發(fā)揮作用,以維持細(xì)胞內(nèi)m6A水平的穩(wěn)態(tài)平衡1。
Writers:在RNA加上甲基,介導(dǎo)RNA的甲基化修飾過程。干這活的是甲基轉(zhuǎn)移酶,最常見的分子是METTL3和METTL14,兩者可在體外和體內(nèi)催化mRNA(和其他細(xì)胞核RNA)的m6A甲基化。WTAP是這種甲基轉(zhuǎn)移酶復(fù)合體中的另一個(gè)關(guān)鍵組分。
Erasers:將RNA上甲基去除,介導(dǎo)RNA的去甲基化修飾過程。FTO和ALKBH5可以去除mRNA(和其他細(xì)胞核RNA)上的m6A甲基化。
Readers:識別RNA甲基化修飾的信息,并參與下游RNA的翻譯、降解等過程。比如,YTHDC1可與mRNA上的m6A修飾,促進(jìn)mRNA出核運(yùn)輸與可變剪接。YTHDF1/YTHDF3識別m6A后可促進(jìn)mRNA的翻譯,而YTHDF2與m6A的結(jié)合則會促進(jìn)mRNA的降解。
m6A思路中關(guān)鍵技術(shù)手段:
M6A-seq和MeRIP-seq測序方法建立于2012年。技術(shù)原理是使用特異性抗體富集m6A修飾的RNA片段,將mRNA隨機(jī)片段化,進(jìn)行高通量測序。MeRIP-Seq/m6A-seq 需要構(gòu)建兩個(gè)文庫:MeRIP-Seq/m6A-seq文庫(IP,免疫沉淀)和 RNA-seq文庫(input,對照)。
其中LC-MS/MS和比色法能夠檢測mRNA整體的m6A水平,在這里我自己的實(shí)驗(yàn)用的是比色法,我也更推薦比色法,雖然比色法與LC-MS/MS比較相似,也是從整體水平上檢測RNA上m6A甲基化水平。相對于LC-MS/MS較為繁瑣的操作,比色法更為簡便。研究人員既可以提取totAl RNA,也可以利用oligodT磁珠富集mRNA。還有對應(yīng)的試劑盒可以使用,其核心原理與ELISA反應(yīng)類似,經(jīng)過優(yōu)化后檢測m6A靈敏度也高。
還有一項(xiàng)必備的驗(yàn)證試驗(yàn)用來驗(yàn)證甲基化相關(guān)酶與關(guān)鍵基因結(jié)合:所謂m6A-IP-qPCR也叫MeRIP-qPCR,即利用m6A抗體在富集到帶甲基化修飾的RNA后,下一步使用qPCR直接對富集到的RNA進(jìn)行定量的一種技術(shù)。這種技術(shù)可以做到對發(fā)生甲基化的RNA進(jìn)行相對定量,是一種低成本的檢測方法,僅需m6A抗體,A/G免疫磁珠,磁力架和qPCR儀及配套試劑盒即可開展這類實(shí)驗(yàn)。
鐵死亡
鐵死亡(ferroptosis)是近年發(fā)現(xiàn)的一種新型細(xì)胞死亡方式,其特征是脂質(zhì)過氧化物和活性氧(ROS)的過量蓄積。由于該過程依賴鐵,所以被稱為鐵死亡。鐵死亡不僅與眾多疾病的發(fā)生發(fā)展有關(guān),其相關(guān)信號通路上的關(guān)鍵蛋白也可成為藥物的作用靶點(diǎn)。鐵死亡的的本質(zhì)是細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)氧化物的代謝障礙,進(jìn)而在鐵離子的催化下異常代謝,產(chǎn)生大量脂質(zhì),破壞細(xì)胞內(nèi)氧化還原平衡,攻擊生物大分子,觸發(fā)細(xì)胞的死亡2。
上圖看起來復(fù)雜,但是還是有思路可循,我把其思路進(jìn)行梳理變化成相關(guān)的鐵死亡的特點(diǎn)
根據(jù)這些鐵死亡的特點(diǎn),也就衍生出對應(yīng)的研究工具出現(xiàn)
形態(tài)觀察:透射電鏡直接對細(xì)胞形態(tài)進(jìn)行觀察:細(xì)胞發(fā)生鐵死亡時(shí)線粒體變小以及線粒體膜密度較大;
活性氧水平:細(xì)胞內(nèi)活性氧和脂質(zhì)活性氧通過流式細(xì)胞術(shù)使用DCFH-DA和C11-BODIPY 熒光探針(購買試劑盒)檢測
細(xì)胞活性檢測“”MTT/CCK8檢測細(xì)胞活性
鐵水平檢測:可以使用PGSK探針,流式細(xì)胞術(shù)或共聚焦顯微鏡檢測細(xì)胞內(nèi)鐵含量的細(xì)胞膜透性染料;或者使用Iron AssAy Kit(試劑盒)檢測細(xì)胞、組織中的鐵水平
線粒體膜電位檢測:通過流式細(xì)胞儀收集TMRE陽性細(xì)胞的比例
qRT-PCR/Western blot檢測:檢測細(xì)胞內(nèi)與鐵死亡相關(guān)的因子的變化,例如COX-2,ACSL4,PTGS2,NOX1,GPX4和FTH1等,其中COX-2,ACSL4,PTGS2和NOX1在鐵死亡細(xì)胞中表達(dá)上調(diào);GPX4和FTH1在鐵死亡細(xì)胞中表達(dá)下調(diào)。
下面我們進(jìn)入正題:
這次我主要給大家?guī)韮蓚€(gè)思路,這兩個(gè)思路的特點(diǎn)是簡單好上手換個(gè)疾病就是一篇SCI。
這里蛋和雞自然指的就是m6A甲基化和鐵死亡。第一種思路是先發(fā)現(xiàn)m6A甲基化再去聯(lián)系鐵死亡:m6A甲基化關(guān)鍵酶可以誘導(dǎo)鐵死亡
1、m6A甲基化及其關(guān)鍵酶改變
首先我們得確定研究的疾病或者表型是否有m6A甲基化及其關(guān)鍵酶差異表達(dá)。舉個(gè)例子:在這里作者3的結(jié)果表明,BPQD暴露(處理組)增加了肺細(xì)胞中整體RNA m6A的水平,這可能與去甲基酶ALKBH5的下調(diào)有關(guān)。
2、然后作者將處理組細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組和表位轉(zhuǎn)錄組的變化
這步就是具體研究哪些甲基化相關(guān)酶發(fā)生變化,有沒有具體的位點(diǎn)。
這些結(jié)果表明,RNA m6A表位轉(zhuǎn)錄組確實(shí)受到處理方式對肺細(xì)胞的生物學(xué)影響。并且這種影響很有可能和眾所周知,脂氧合酶途徑、對硒離子的反應(yīng)以及脂肪酸代謝過程密切相關(guān)。鐵死亡是一種新的調(diào)節(jié)細(xì)胞死亡的形式。它通常是由嚴(yán)重的脂質(zhì)過氧化、谷胱甘肽(GSH)耗竭和鐵超載引起。在死亡細(xì)胞中,線粒體的形態(tài)發(fā)生了很大的變化,包括體積變小,嵴減少,膜濃縮,外膜破壞。在這里,作者通過外轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄分析發(fā)現(xiàn)處理方式可能引發(fā)肺細(xì)胞的鐵死亡。
接下來作者繼續(xù)探索機(jī)制和下游的影響這是文章深度的關(guān)鍵!ALKBH5基因敲除增加m6A并加重處理誘導(dǎo)的鐵死亡。這些結(jié)果表明,處理組通過抑制ALKBH5的表達(dá)而引發(fā)肺細(xì)胞鐵死亡。
無獨(dú)有偶,在另一篇文章4中作者也發(fā)現(xiàn)YTHDC2誘導(dǎo)了LUAD細(xì)胞內(nèi)源性鐵死亡。
在這里作者選用了過表達(dá)m6A甲基化關(guān)鍵酶閱讀器YTHDC2,作者在這里一定是做了相關(guān)的預(yù)實(shí)驗(yàn),才精準(zhǔn)的確定了YTHDC2的作用,我個(gè)人更傾向于于用生信的方法去篩選,不僅可以提升文章的檔次,還可以增加成功的概率。作者發(fā)現(xiàn)YTHDC2在H1299和H1975細(xì)胞中不受經(jīng)典鐵死亡誘導(dǎo)劑和抑制劑如erAstin、RSL3、Fer-1和DFO的影響,表明YTHDC2是一種獨(dú)立的內(nèi)源性體外死亡誘導(dǎo)劑,發(fā)揮著經(jīng)典鐵死亡誘導(dǎo)劑或抑制劑不可替代的作用。
有沒有感覺到很熟悉,相似的思路和套路。不僅如此還可以進(jìn)階做一些機(jī)制實(shí)驗(yàn)。比如:線粒體和抗氧化基因mRNAs的m6A修飾被YTHDF2識別。還可以分別從MeRIPseq和RNA-seq的數(shù)據(jù)中對差異m6A峰與其相應(yīng)基因的表達(dá)水平進(jìn)行了關(guān)聯(lián)分析。根據(jù)RNA-seq分析YTHDF2在許多類型的細(xì)胞或組織中負(fù)責(zé)調(diào)節(jié)mRNA的翻譯、衰變和清除。然后,還可以用RNA免疫沉淀(RIP)qPCR方法檢測了YTHDF2的候選靶向mRNA及其在處理后的變化。
這樣就進(jìn)一步增加了機(jī)制的研究文章的檔次也就上去了。
第一種思路是先通過m6A甲基化來與鐵死亡相關(guān)聯(lián),第二種思路5自然是先有鐵死亡再有m6A甲基化。臨床前和臨床藥物(如索拉非尼和Erastin)可以誘導(dǎo)HSC鐵死亡。m6A修飾是否參與HSC鐵死亡的調(diào)節(jié)?為了測試這種潛在的可能性。
1、作者首先檢測了HSC鐵死亡期間m6A的修飾水平。引人注目的是,m6A rnA甲基化定量分析和斑點(diǎn)印跡顯示,索拉非尼、erastin和RSL3治療后m6A修飾水平顯著增加。接下來就是苦力活了,驗(yàn)證幾種甲基化的關(guān)鍵酶,因?yàn)檫@個(gè)時(shí)候已經(jīng)證明了甲基化的變化。在HSC鐵死亡中,METTL4而不是其他甲基轉(zhuǎn)移酶的蛋白導(dǎo)致mRNA的表達(dá)顯著上調(diào),而FTO而不是其他去甲基化酶的水平顯著下調(diào)。這些結(jié)果表明,HSC鐵死亡時(shí)m6A的修飾增加是由于Writers METTL4和Erasers FTO的失調(diào)所致。
由于所以利用穩(wěn)定轉(zhuǎn)染METTL4 shRNA或FTO質(zhì)粒的HSC-Lx2細(xì)胞,研究上調(diào)的m6A修飾是否直接參與了鐵死亡的誘導(dǎo)。經(jīng)費(fèi)不足可選擇一個(gè)做就可里啦。m6A RNA甲基化定量分析證實(shí),METTL4基因敲除和FTO過表達(dá)均可完全減弱Erastin誘導(dǎo)的HSC-Lx2細(xì)胞m6A修飾上調(diào)此外,METTL4 shRNA或FTO質(zhì)??娠@著解除Erastin和索拉非尼對HSC-Lx2和HSC-T6細(xì)胞的生長抑制??傮w而言,這些數(shù)據(jù)表明,鐵死亡誘導(dǎo)治療上調(diào)m6A修飾可能有助于HSC鐵死亡。說到底就是驗(yàn)證試驗(yàn),當(dāng)然這步也是必不可少的。
但是這樣還達(dá)不到一定的深度,到不了5+。因?yàn)闄C(jī)制還差了點(diǎn),那就是m6A修飾是通過那些途徑引導(dǎo)鐵死亡的?總不能一個(gè)一個(gè)猜吧。這個(gè)時(shí)候篩基因當(dāng)然有請進(jìn)一步的RNA測序(RNA-seq),進(jìn)一步探討m6A修飾促進(jìn)HSC鐵死亡的分子機(jī)制,并確定參與谷氨酰胺代謝途徑、非經(jīng)典自噬途徑和經(jīng)典鐵代謝途徑的靶基因。重要的是,KEGG的分析和GO分析充分表明,在HSC鐵死亡過程中,自噬信號可能受到m6A修飾的調(diào)節(jié)。此外,m6A RNA免疫沉淀(MERIP)qPCR顯示,HSC鐵死亡患者BECN1的m6A修飾水平增加,而ATG3、ATG4A、ATG5、ATG7、ATG9A、ATG12和ATG16L1的m6A修飾水平無明顯變化。一致地,用FTO質(zhì)粒或METTL4 shRNA減少m6A修飾后,BECN1的蛋白表達(dá)顯著降低,而其他自噬相關(guān)基因沒有明顯差異??傊@些數(shù)據(jù)表明,m6A修飾誘導(dǎo)的鐵死亡與自噬激活有關(guān)。做到這些已經(jīng)可以輕松駕馭5+了~
全文總結(jié):
以上,大家是否感覺m6A結(jié)合鐵死亡這種強(qiáng)強(qiáng)聯(lián)合的文章也不是很難呢?這篇文章的亮點(diǎn)在于我第一次系統(tǒng)地研究了m6A甲基化和鐵死亡的結(jié)合,并建立了較完善的研究方法,對大家的研究啟發(fā)很大。做基礎(chǔ)研究的的基本思路之一就是發(fā)現(xiàn)某種現(xiàn)象、表型等,然后分析探討其背后的原因。一件復(fù)雜的事物中往往蘊(yùn)含著簡單規(guī)律,無論是學(xué)習(xí)科研還是做科研也都是有規(guī)律可循。今天我借借用幾篇文章一窺普通科研思路套路的升華過程。
正如我開頭所說因?yàn)閙6A會涉及大多數(shù)疾病和表型,所以不用太擔(dān)心你研究的內(nèi)容沒有m6A修飾。并且根據(jù)我的檢索這類文章非常少,你還不抓緊時(shí)間上車~
參考文獻(xiàn):
1. Uddin MB, Wang Z, Yang C. The m(6)A RNA methylation regulates oncogenic signaling pathways driving cell malignant transformation and carcinogenesis. Mol Cancer 2021; 20(1): 61.
2. Jiang X, Stockwell BR, Conrad M. Ferroptosis: mechanisms, biology and role in disease. Nat Rev Mol Cell Biol 2021; 22(4): 266-82.
3. Ruan F, Zeng J, Yin H, et al. RNA m6A Modification Alteration by Black Phosphorus Quantum Dots Regulates Cell Ferroptosis: Implications for Nanotoxicological Assessment. Small Methods 2021; 5(3): e2001045.
4. Ma L, Zhang X, Yu K, et al. Targeting SLC3A2 subunit of system XC(-) is essential for m(6)A reader YTHDC2 to be an endogenous ferroptosis inducer in lung adenocarcinoma. Free Radic Biol Med 2021; 168: 25-43.
5. Shen M, Li Y, Wang Y, et al. N(6)-methyladenosine modification regulates ferroptosis through autophagy signaling pathway in hepatic stellate cells. Redox Biol 2021; 47: 102151.